IL MINISTRO DELLE POLITICHE AGRICOLE
ALIMENTARI E FORESTALI
Vista la direttiva n. 2000/29/CE del Consiglio, dell'8 maggio 2000,
concernente le misure di protezione contro l'introduzione nella
Comunita' di organismi nocivi ai vegetali o ai prodotti vegetali e
contro la loro diffusione nella Comunita', e successive
modificazioni;
Visto il decreto legislativo 19 agosto 2005, n. 214, relativo
all'attuazione della direttiva 2002/89/CE concernente le misure di
protezione contro l'introduzione e la diffusione nella Comunita' di
organismi nocivi ai vegetali o ai prodotti vegetali, e successive
modificazioni;
Vista la direttiva n. 2008/61/CE della Commissione, del 17 giugno
2008, che stabilisce le condizioni alle quali taluni organismi
nocivi, vegetali, prodotti vegetali e altri prodotti elencati negli
allegati I, II, III, IV e V della direttiva 2000/29/CE del Consiglio
possono essere introdotti o trasferiti da un luogo all'altro nella
Comunita' o in talune sue zone protette per prove o scopi scientifici
e per lavori di selezione varietale;
Considerata la necessita' di recepire la direttiva n. 2008/61/CE
della Commissione, ai sensi dell'art. 57 del decreto legislativo n.
214/05;
Acquisito il parere del Comitato fitosanitario nazionale espresso
nella seduta del 27 e 28 maggio 2010;
Acquisito il parere della Conferenza permanente per i rapporti tra
lo Stato, le Regioni e le Province Autonome di Trento e di Bolzano,
espresso nella seduta del 7 ottobre 2010;
Decreta:
Articolo unico
1. Gli allegati XVI e XVII del decreto legislativo 19 agosto 2005,
n. 214, sono cosi' di seguito modificati:
a) Nell'allegato XVI, le parole «direttiva 95/44/CE» sono
sostituite dalle parole «direttiva 2008/61/CE»;
b) Nell'allegato XVII, parte A, sezione II, le parole «direttiva
77/93/CEE» sono sostituite dalle parole «direttiva 2000/29/CE»;
c) Nell'allegato XVII, parte A, e' aggiunta la seguente sezione
IV:
Sezione IV: Vegetali delle specie stolonifere o tuberifere di
Solanum L. o relativi ibridi, destinati alla piantagione
1. Il materiale vegetale deve essere sottoposto, secondo i casi, a
idonee terapie secondo quanto stabilito nelle direttive tecniche
FAO/IBPGR.
2. Dopo le terapie di cui al punto 1, ogni unita' del materiale
vegetale e' sottoposta a indexaggio. Tutto il materiale vegetale,
compresi i vegetali di indexaggio, viene conservato negli impianti
approvati, nelle condizioni di quarantena stabilite nell'allegato I.
Durante il periodo dell'indexaggio, il materiale vegetale da
immettere ufficialmente in circolazione deve essere conservato in
condizioni atte a favorire il normale ciclo vegetativo e sottoposto
ad esame visivo per individuare eventuali segni o sintomi di
organismi nocivi, compresi tutti gli organismi nocivi pertinenti
elencati nella direttiva 2000/29/CE e il potato yellow vein disease,
all'arrivo e successivamente ad intervalli regolari fino alla
senescenza.
3. Per le procedure d'indexaggio di cui al punto 2 occorre seguire
le disposizioni tecniche illustrate al punto 5, per poter individuare
almeno i seguenti organismi nocivi:
batteri:
a) Clavibacter michiganensis (Smith) Davis et al. ssp.
sepedonicus (Spieckermann et Kotthoff) Davis et al.;
b) Ralstonia solanacearum (Smith) Yabuuchi et al.,
virus e viroidi:
a) andean potato latent virus;
b) potato black ringspot virus;
c) potato spindle tuber viroid;
d) potato yellowing alphamovirus;
e) potato virus T;
f) andean potato mottle virus;
g) virus comuni della patata, A, M, S, V, X e Y (compresi Yo,
Yn e Yc) e potato leaf roll virus.
Nel caso di veri tuberi seme di patate, tuttavia, le procedure di
indexaggio debbono essere effettuate in modo tale da individuare
perlomeno i virus e gli organismi simili ai virus di cui alle
precedenti lettere da a) a e).
4. Il materiale vegetale sottoposto all'esame visivo di cui al
punto 2 e sul quale sono stati osservati segni e sintomi di organismi
nocivi forma oggetto di un'indagine e, se del caso, di un esame
intesi a determinare, con la maggior esattezza possibile, l'identita'
degli organismi nocivi che provocano detti segni e sintomi.
5. Le disposizioni tecniche di cui al punto 3 sono le seguenti:
per i batteri:
1) per i tuberi, esaminare l'ombelico di ogni tubero. Il
campione standard e' di 200 tuberi, ma la procedura puo' essere
utilizzata anche per campioni inferiori a 200 tuberi;
2) per le piante e le talee, comprese le micropiante, esaminare
le parti inferiori dello stelo e, se necessario, le radici di ogni
unita' del materiale vegetale;
3) si raccomanda di esaminare la progenie dei tuberi oppure,
per le specie non tuberifere, la base dello stelo durante il normale
ciclo vegetativo successivo all'esame di cui ai punti 1 e 2;
4) per il materiale di cui al punto 1, il metodo per
l'individuazione di Clavibacter michiganensis (Smith) Davis et al.
ssp. Sepedonicus (Spieckermann et Kotthof) Davis et al. e' il metodo
comunitario stabilito nell'allegato I della direttiva 93/85/CEE del
Consiglio (1). Per il materiale di cui al punto 2, puo' essere
applicato tale metodo;
5) per il materiale di cui al punto 1, il metodo per
l'individuazione di Ralstonia solanacearum (Smith) Yabuuchi et al. e'
lo schema di esame contenuto nell'allegato II della direttiva
98/57/CE (2). Per il materiale di cui al punto 2 puo' essere
applicato tale metodo;
per i virus e i viroidi diversi dal potato spindle tuber viroid:
1) l'esame minimo per il materiale vegetativo (tuberi, piantine
e talee, comprese micropiante) consiste in un esame sierologico
realizzato al momento o in prossimita' della fioritura per ciascuno
degli organismi nocivi specificatamente elencati diversi dal potato
spindle tuber viroid, seguito da un esame biologico del materiale che
ha dato esito negativo all'esame sierologico. Per il virus
dell'accartocciamento debbono essere effettuate due prove
sierologiche;
2) l'esame minimo per i veri tuberi seme consiste in un esame
sierologico o in un esame biologico, qualora il primo non sia
disponibile. Si raccomanda vivamente di sottoporre nuovamente ad un
esame una certa percentuale di campioni che hanno dato esito negativo
e di ricorrere ad un altro metodo per i casi dubbi;
3) gli esami sierologici e biologici di cui ai punti 1 e 2
vanno effettuati su vegetali coltivati in serra, dai quali sono stati
prelevati campioni in almeno due punti di ciascuno stelo, compresa
una giovane foglia completamente formata all'apice di ogni stelo e
una foglia piu' vecchia situata circa a meta'; occorre prelevare
campioni da ogni stelo, vista la possibilita' di infezioni non
sistematiche. Per l'esame sierologico non vanno messe insieme le
foglioline di piante diverse, tranne qualora il rapporto di
composizione del campione sia stato convalidato per il metodo in
questione; le foglioline di ogni stelo possono essere tuttavia
raggruppate per costituire il campione di un singolo vegetale. Nel
caso dell'esame biologico si possono mettere insieme fino a cinque
vegetali inoculando un numero minimo identico di vegetali indicatori;
4) i vegetali indicatori da utilizzare per l'esame biologico di
cui ai punti 1 e 2 sono quelli elencati dall'Organizzazione europea e
mediterranea per la protezione delle piante (OEPP) oppure altri
vegetali indicatori ufficialmente approvati che hanno dimostrato di
poter individuare i virus;
5) solamente il materiale che e' stato direttamente esaminato
puo' uscire dalla quarantena. Qualora sia stato fatto un indexaggio
degli occhi, puo' uscire dalla quarantena solamente la progenie
dell'occhio esaminato. Il tubero non puo' essere messo in
circolazione a causa dei possibili problemi dovuti ad un'infezione
non sistemica;
potato spindle tuber viroid:
1) per tutto il materiale vegetale gli esami debbono avvenire
su vegetali coltivati in serra, non appena hanno raggiunto il pieno
sviluppo, ma prima della fioritura e della produzione di polline. Gli
esami su germogli di tuberi/vegetali coltivati in vitro/piccole
plantule e' considerato esclusivamente come un esame preliminare;
2) i campioni sono prelevati da una fogliolina perfettamente
formata all'apice di ogni stelo del vegetale;
3) tutti i materiali da esaminare sono coltivati a temperature
non inferiori ai 18 °C e preferibilmente superiori a 20 °C e con
un'esposizione alla luce di almeno 16 ore;
4) l'esame avviene con sonde di cDNA o RNA marcate
radioattivamente o meno, col metodo return-PAGE (colorazione con
argento) o RT-PCR;
5) per le sonde e il metodo return-PAGE il rapporto di
composizione massimo del campione e' di 5. L'utilizzazione di questo
rapporto o di un rapporto superiore dev'essere convalidato.
Il presente decreto sara' inviato alla Corte dei conti per la
registrazione e sara' pubblicato nella Gazzetta Ufficiale della
Repubblica italiana.
Roma, 19 ottobre 2010
Il Ministro: Galan
Registrato alla Corte dei conti il 16 novembre 2010, Ufficio di
controllo atti Ministeri delle attivita' produttive, registro n. 4,
foglio n. 338.